Analiza cantitativă a glucozei - de referință chimist 21

Determinarea cantitativă a carbonului și a hidrogenului, care trebuie să fie efectuată în conformitate cu rezultatele analizei calitative a glucozei este efectuată întotdeauna în același timp, de multe ori folosind o metodă clasică Liebig este după cum urmează. [C.173]

In ultimii ani, datorită utilizării enzimelor funcției de electrozi ion selectivi capabili să se extindă în mod semnificativ și a le face potrivite pentru analiza rapida clinice de glucoza, uree, aminoacizi și alți metaboliți. Astfel de electrozi sunt numite electrozi de enzime, sau senzori electrochimici. Crearea de electrozi cu aceste proprietăți este posibilă, deoarece numărul de enzime foarte specifice, adică. E. Capacitatea de a cataliza conversia unei singure substanțe de mai multe sute sau chiar mii de substanțe aproape natură chimică. Dacă, de exemplu, enzima catalizează reacția. în timpul căreia modificările pH-ului mediului, electrodul sensibil la pH. comprimate filmate gel sau un polimer care conține această enzimă, permite determinarea cantitativă numai substanța, care este convertit sub acțiunea enzimei. Din uree în prezența enzimei ureazei ionilor MH + sunt formate. Dacă electrodul ion selectiv. NH ion sensibil. acoperi de film. care cuprinde ureazei, folosind apoi posibilă determinarea ureei cantitativ. electrozi enzimatici - un exemplu de utilizare practică tot mai mare de enzime în știință și inginerie. [C.138]

Toate medicamentele injectabile înainte de sterilizare trebuie să fie supuse controlului chimic de autenticitate, iar prezența chimistului analitic într-o farmacie - și cantitativ Anali-ay. soluție novocaină. sulfat de atropină. clorură de calciu. glucoză și soluție de clorură de sodiu izotopică în nici un caz să fie neapărat calitativă (identificare) și analiza cantitativă. [C.305]

Greutatea moleculară a glucozei. Există mai multe metode diferite pentru a determina greutatea moleculară a materiei solide organice. Cel mai frecvent greutatea moleculară determinată prin densitatea de vapori a substanței sau prin metoda cryoscopic. Aceste metode au fost învățate de studenți pe parcursul fizicii și de analiză cantitativă. Pentru a evita repetarea inutilă, nu vom descrie aceste tehnici de aici, dar menționăm doar pe scurt că greutatea moleculară a glucozei, așa cum este determinat printr-o metodă cryoscopic. a fost egal cu 180. [c.176]

La selectivitate tisulară glutamina al senzorului poate fi, de asemenea, evaluate de rezultatele analizei cantitative a probelor de testare de lichid cefalorahidian (LCR) [7]. probe de LCR, după trecerea printr-un schimbător de cationi pentru îndepărtarea amoniacului de fond, care poate afecta semnalul biosenzor, concentrația de glutamină poate fi măsurată cu precizie bună și reproductibilitate în toată gama clinic importante. In aceste măsurători, o soluție tampon de lucru pentru a fi administrat pentru a suprima reacția iodacetamidă de interferență care implică glucoza. Aparent, ca urmare a glicolizei cu celule renale din acid produce glucoza. care influențează potențialul senzorului de amoniac sensibil la pH. Iodacetamidă este cunoscut ca inhibitor al glicolizei și a fost găsit pentru a inhiba eficient sensibilitatea glutamină biosenzor la glucoza. Determinarea glutaminei în LCR poate fi efectuată într-un interval de concentrație de 2.2-10 -1,29-10 M cu o deviație medie standard relativă de 5,6%. Un astfel de senzor poate fi util, de exemplu, în sindromul de studiu Reye, în cazul în care un nivel ridicat de glutamina este considerată ca un criteriu de diagnostic. [C.37]

Din moment ce nu știm unitatea anormală este situată în cazul în care în lanțul. Presupunem ca o primă aproximare. este la fel de probabil să fie în orice poziție. Apoi, când un anormal de o legătură per moleculă (metilare incertitudine) se va opri hidroliza enzimatică a mediei în mijlocul fiecărui lanț. Acest lucru înseamnă că randamentul glucozei rezultată este de 50% din conținutul total în eșantion. Această discrepanță cu rezultatele așteptate pentru polizaharid regulate (100%), este posibil să se detecteze chiar și cele mai dure metode de analiză. Precizia efectivă a determinării glucozei prin metode standard, este de câteva procente. Spunem cu atenție 5%. Acest lucru înseamnă că, dacă vom obține glucoza, cu randament cantitativ în hidroliza enzimatică a polizaharidului și ținând cont de eroarea de 5%, putem spune că, cel puțin. 90% din moleculele de polimer din eșantion au o structură regulată și nu conțin unități anormale. Astfel. cu referire la exemplul nostru regulat, stabilit prin metilare, nu pretinde nici dreptul care are molecula de polizaharide. care nu conține nici un nivel anormal. și regularitate instalat folosind hidroliza enzimatică, ne permite să spunem că cel puțin 90% din toate moleculele obișnuite de probă, în sensul strict al cuvântului. diferență cantitativă, dar, evident, acesta se transformă în calitate. [C.105]

Pentru o analiză cantitativă a unui amestec de zaharuri, am dezvoltat o metodă borhidrura nolyarimetrichesky. Această metodă poate fi utilizată, de exemplu, pentru analiza amestecurilor de zaharoză și glucoză. Neavând o grupare aldehidă. Zaharoza nu reacționează cu sodiu borgidri-house sau de potasiu, astfel. rotația optică în prelucrarea acestui reactiv nu se schimbă. Glucoza aceeași sub borhidrură restabilite la sorbitol, rotația optică care este în mod substanțial egală cu zero. Astfel. rotația optică a amestecului pentru a recupera aceeași cantitate de rotații zaharoză și glucoză, și rotația optică după restaurarea este creată numai cu zaharoză. Două măsurători de rotație (înainte și după prelucrare borohidrură) furnizează datele necesare pentru a calcula compoziția amestecului. Oarecum construite în mod diferit analiza amestecului de glucoză și fructoză. Aici, atât zahăr poate recupera borohidrură. Recuperarea se efectuează în versiunea sa cantitativă, vă permite să se determine cantitatea de zahăr. Raportul dintre glucoză și fructoză în amestec se determină din rotație. Eroarea relativă în aceste definiții 1 - 3%. [C.319]

Pentru analiza cantitativă a amestecului de zaharuri proiectat metoda borgidridpo-polarizare-metric. care poate fi determinat un amestec de zaharoză și glucoză, glucoza și fructoza. [C.352]

Încălzit la coloana 60 ° C (45x1,5 cm) care a fost anterior turnat la un nivel de 43 cm celuloză pulbere de brand Whatman CP-12 (vezi fig. Sec. Și B, cromatografia pe celuloză) utilizată pentru separarea și analiza cantitativă a zaharidelor, construite din 4-15 unități de glucoză [24]. Faza mobilă a fost pompat din dispozitivul pentru eluție cu gradient. care a constat dintr-un balon conic de 250 ml, umplut [c.84]

Este mult mai dificil de a determina chiar și cea mai simplă formulă a materiei organice. nu se disociază în soluție în ioni, cum ar fi VOS glucoza, 20b pentru aceasta trebuie să facem nu numai analiza calitativă, ci și cantitativ. [C.16]

Tulpina și colaboratorii [48, 50] au demonstrat legătură colorantului fibrei, colorarea pulberii de celuloză parțial hidrolizată Remazolovym albastru strălucitor R și supunerea acestuia la degradare microbiologică sub Se11i1otopaz is1a. Ei au reușit să izoleze o degradare colorat produs solubil de celuloză și dovedesc analiză cromatografică. este o substanță omogenă și că după hidroliza completă cu acid sulfuric obținut din acesta glucoza. Ulterior, hidrolizatul de celuloză vopsită au izolat compus omogen. conținând 1 mol de colorant și glucoză. Acești compuși au fost supuse metilare exhaustive cu iodură de metil și oxid de argint în dimetilformamidă și apoi se lega colorantul a fost hidrolizat prin alcaline și metilglucozida - acidul. În comparație cu methylglucose sintetic a dezvăluit că glucoza a fost substituit în poziția 2 și 4. Analiza cantitativă completă a arătat că substituția la atomul de hidroxil este de 60%, iar la ambele capete ale lanțului, 20% [534]. [C.317]

Glucoză oxidază se obține la scară industrială, și este utilizat în special pentru analiza cantitativă a glucozei în amestecuri de zaharuri. O proprietate importantă este capacitatea enzimei la grupul său activ - flavin coenzimă - reacționează direct cu oxigenul molecular. [C.207]

Influența structurii și NF polaritate separare selectivitate. Am constatat că cele mai potrivite pentru analiza fenoli NF. numărul de atomi de carbon în catena laterală diferite. sunt Apia -linia și L dimetilpolisiloxan, și să se separe în funcție de gradul de influență a sterice gruparea OH - sau eritritolul etilenmerkapto-a-glucoză. Necesitatea calibrării pentru analiza cantitativă cu detecție prin conductivitate termică. [C.137]

Analiza cantitativă a fost realizată glicozidelor prin reacția cu antronă după eluare din cromatograma și scindarea glucozei. [C.600]

Transformarea fibrinogenului în fibrină are loc prin acțiunea trombinei enzimă proteolitică, care, în condiții normale, înainte de activarea este în plasmă sub forma predecesorului său - protrombina. Mai întâi protrombinei și trombină au fost izolate în formă purificată Sigersom et al. [160] în prezent pentru obținerea preparatelor înalt purificate de protrombină și trombină utilizate metode mai bune [161-163]. Lamy și Vq [1641 au avut un studiu fizico-chimice profundă a greutății moleculare de protrombina protrombina, conform datelor lor, este de 62 700. Conform analizei cantitative [165] Porțiunea de carbohidrați protrombinei conține 6,5% hexoze, 1,7% hexosamines, pentoze foarte mici și nu conține acizi hex-Ronova. Conversia protrombinei în trombină poate fi activată în două moduri [159] 1) săruri în concentrații ridicate (25% soluție de citrat de sodiu) și 2) aditivi de factori de țesut și plasmă, protrombina la soluții. Molecule capabile de agregare trombinei, rezultând foarte variate cantități de greutatea sa moleculară. raportate în literatura de specialitate. Aparent, monomerul minimă de trombina de greutate moleculară este de aproximativ 8000 [159, 166]. Lorand și colab. [167] au arătat că activarea protrombinei 25% citrat de sodiu din protrombina este scindat de carbohidrați. În etapele anterioare ale procesului de activare a protrombinei 40-60% carbohidrați și aproximativ aceeași cantitate de azot este redat solubil în acid tricloracetic. Numărul de hexoze și hexosamine, care sunt solubile în acid tricloracetic la activarea protrombinei. constituie, de asemenea, 40-60%. Miller și Sigers] 168] au investigat un fragment carbohidrat. deprinsă de protrombină după activare. amestec activat de trombina de sulfat de amoniu precipitat. și supernatantul a fost recuperat fracția de carbohidrați. În hidroliza fracțiunii de carbohidrați numai glucoza a fost găsit în hidrolizatul. Din moment ce nu hexosamine nu a putut fi găsit, s-a sugerat că în procesul de activare a hexosamine protrombină poate fi scindate enzimatic din hexoze. [C.253]

Corect ales porozitatea granulelor și condiții experimentale atent proiectate. Acesta poate fi divizat molecule foarte asemănătoare, sau, dimpotrivă, moleculele care aparțin complet diferite clase. Deosebit de dificil să se separe un amestec de substanțe diferite. dar, în aceste condiții, nu este la fel de importantă o rată de curgere ridicată. Deoarece coloanele mici obținute, în general, randamente cantitative, după separarea componentelor la vârfuri care nu se suprapun pot fi supuse analizei cantitative prin utilizarea metodelor nespecifici. Acest lucru face posibil să se împartă. și apoi desalinizează pe Sephadex 0-15 serie de zaharuri simple. ra-finozu exemplu, maltoză și glucoză [28]. Această diviziune se bazează. de obicei, pe diferentele in analiți masa moleculara. Cu toate acestea, uneori, aceasta se datorează altor cauze. cauzând retenție anumitor molecule în coloană, de exemplu prin adsorbție solutului polar dintr-un solvent nepolar. [C.223]

În analiza cantitativă a reglementării alosterica de ATP, ADP și AMP din extractele brute care conțin glyukozofosfatizomerazu. important să se evite modificări semnificative ale concentrației de F-6-P, ca rezultat al izomerizare. Pentru aceasta poate fi adăugată o soluție 0,2 M de glucoză a fost neutralizat -6-phos-voal (G-6-P) și 20 unități. G-6-P-izomerazei per 1 ml. În decurs de 1 oră la temperatura camerei, cu 0,05 M va fi în soluție F-6-P și 0,15 M G-6-P. Pentru ca unitatea internațională acceptată cantitatea de enzimă. care fosforilează 1 micromol F-6-P în 1 min, în condițiile descrise mai sus la 25 ° C [DAz4o-L2-6,22-10 = (micromoli 1 ml) = -2 micromoli per cuvetă]. [C.398]

Metoda immunoassay Enzymatic. Adăugați 10-20 g de probă (tampon. Ser sau sânge integral) la 1 ml de reactiv de enzimă (preparat în sodiu 0,1 M fosfat tampon. PH 7,0 și conținând 0,2 mol de clorură de sodiu, 0,2-1, 0 mg conjugat [teofilina - peroxidazei] 100 mg de glucoză 2 g de IgG de oaie non-imune). Amestecul rezultat a fost imersat regiune a benzii de testare (4x90 mm) conținând imobilizat anti-teofilină (30 g / cm), iar solventul este lăsată să crească datorită forțelor capilare la benzile de margine opuse (durează 10 minute). Se transferă banda în dezvoltator (preparat prin tampon fosfat de sodiu 0,01 M. PH 7,0, conținând în 1 litru de 0,02 mol de clorură de sodiu, 0,5 g Triton QS-44 400 mg de 4-clornaftol 0,05 mol glucoză 2 g de albumină serică bovină). După 5 min pe hârtie apare regiune vopsită albastru sub forma unei benzi plate sau rachete. Înălțimea regiunii colorate proporțională cu concentrația de analit. Pentru analiza cantitativă, o curbă de calibrare anterior. reflectând dependența înălțimea marginii colorate asupra concentrației teofilinei. [C.135]

Fără a intra în detaliu, cantitativ mai larg de enzimă care conțin senzorii conductive mai multe soiuri utilizate în medicină pentru a determina conținutul de glucoză. Pe baza acestora, va fi dezvoltat de un număr de dispozitive, cum ar fi ieftine, precise și fiabile dispozitive pentru teste in vivo. Se crede că utilizarea principală se vor găsi în reglarea zahărului din sânge la pacienții cu diabet zaharat. Insuficient un control precis al nivelului de zahar in cazul acestei boli, pare să conducă la dezvoltarea pe termen lung, viața în pericol efectele secundare ale diabetului zaharat. Senzorii folosind permite circuitului de comandă închidere în aparatul de pancreas artificial. [C.19]